TRIzol提取RNA和DNA简要说明
准备试剂：TRIzol氯仿100%异丙醇%乙醇无RNase的水handy pestle
操作步骤：RNA操作在冰上进行
1、每50～100mg组织加入1ml TRIzol ，handy pestle匀浆RNALater保存的组织，（其实组织50mg提出的RNA大大富余）
 2、将匀浆样品在室温（15～30℃）放置5分钟，使核酸蛋白复合物完全分离。
 3、每使用1ml TRIzol加入0.2ml氯仿，用手剧烈振荡15秒，室温放置3分钟。
 4、4℃12,000×g离心15分钟。样品分为三层：底层为黄色有机相，上层为无色水相和一个中间层。RNA主要在水相中，水相体积约为所用TRIzol试剂的约50%。
5、用200ul的枪2枪把水相转移到新管中（样本足够因此少抽以防止DNA污染）。
 6、1mlTRIzol加入0.5ml100%异丙醇，颠倒混匀，室温放置10分钟。
7、4℃12,000×g离心10分钟，移去上清，之后可以看到RNA沉淀。
 8、1ml TRIzol至少加1ml 80%乙醇。（-20°放一年） 10、vortex混匀，4℃下7500×g离心5分钟，弃上清，也可见沉淀。
9、室温放置干燥RNA沉淀，大约5～10分钟即可.加入无RNase的水（乳腺癌100mg样本加50ul浓度大约为2ug/ul），用枪头吸打几次，稍微离心，55～60℃放置10分钟使RNA溶解。可-80℃保存一段时间，最好马上逆转录。
 10、260比280是1.8-2.1（低可能是污染，也可能测时候的问题）产量公式：260×稀释倍数×40=ug/ml DNA的分离准备试剂：乙醇0.1M柠檬酸钠（含10%乙醇） 75%乙醇8mM NaOH 操作步骤： 样品加氯仿分层后，移去上层水相， 1mlTRIzol加0.3ml无水乙醇混匀，颠倒混匀，室温放置3分钟 4℃2000×g离心5分钟。 去上清，用含10%乙醇的0.1M柠檬酸钠洗涤DNA沉淀。每用1mlTRIzol加入1ml柠檬酸钠，室温放置30分钟， 4℃2000×g离心5分钟，弃上清 （大于200ug的DNA重复一次1-3步骤）。 1ml TRIzol加入1.～2 ml75%乙醇，室温放置10～20分钟不时颠倒混合4℃2000×g离心5分钟， 弃上清。 室温放置晾干DNA 5～15分钟，用8mM NaOH 300l8mMNaOH溶解从1mg组织可能1-4ugDNA。溶解DNA后可用HEPES调节pH。 、DNA中可能包含一些胶状不溶物可>1000×g离心10分钟除去。 将溶液放入新管中。